如何选择重组蛋白表达系统:原核 vs. 真核,融合 vs. 分泌
在生命科学研究和生物技术应用中,重组蛋白是至关重要的科研试剂。无论是用于结构解析、生化分析、抗体生产还是药物筛选,成功获取高产量、高活性且性质正确的目标蛋白,是实验成功的基石。而这一切的起点,在于为您的目标蛋白选择一个最匹配的表达系统。面对原核与真核、融合与非融合、胞内与分泌等多种选择,如何进行决策?本文将从技术层面,系统解析这几种主流表达策略的核心特点与适用场景,为您提供清晰的选型指南。
核心决策一:原核表达系统 vs. 真核表达系统
选择表达宿主是整个表达策略的顶层设计,主要取决于目标蛋白的复杂性及其对翻译后修饰的需求。
原核表达系统(以大肠杆菌为代表)
核心优势:技术成熟、成本低廉、操作简便、周期短(通常数天即可获得蛋白)、表达量极高。它是重组蛋白高效表达的首选平台,尤其适合对产量有大规模需求的非修饰蛋白生产。
技术考量:大肠杆菌缺乏真核细胞的翻译后修饰机制,如复杂的糖基化、特定的磷酸化等。因此,它最适合表达:
本身来源于原核生物的蛋白。
分子量较小、结构简单、无二硫键或二硫键较少的真核蛋白。
不需要精确翻译后修饰即可满足实验功能(如作为抗原用于免疫动物、进行某些酶活测定)的蛋白。
用于生产包涵体形式的蛋白,后续通过复性获取活性。
主要挑战:复杂真核蛋白易形成包涵体(不溶性聚集体);缺乏糖基化等修饰可能影响蛋白功能与稳定性。
真核表达系统(包括酵母、昆虫细胞和哺乳动物细胞)
核心优势:具备蛋白质正确折叠和翻译后修饰的能力,能生产出更接近天然构象、活性更高的蛋白。这是获得功能活性蛋白,特别是治疗相关蛋白和全长抗体的关键。
技术细分:
酵母表达系统(如毕赤酵母):折中选择。兼具生长快速、易于高密度发酵和部分真核修饰能力(如二硫键形成、基础糖基化)。其强大的分泌表达能力,使得分泌表达和下游纯化极为方便,是许多细胞因子和酶类的理想选择。
昆虫细胞-杆状病毒系统:功能强大。能完成大多数真核修饰,蛋白折叠正确率高,表达水平通常优于哺乳动物细胞。特别适合表达需要复杂修饰的胞内蛋白、病毒样颗粒及难度较大的膜蛋白。
哺乳动物细胞系统(如HEK293, CHO):能提供最接近人类天然蛋白的修饰环境,尤其是复杂的N-连接糖基化。是生产用于高水平功能研究、信号通路分析或结构生物学(要求精确糖型)的蛋白的最终解决方案,但成本最高、周期最长。
核心决策二:融合表达 vs. 非融合表达
这主要关乎表达载体的设计,直接影响蛋白的溶解性、纯化难度和最终应用形式。
融合表达
核心优势:通过在目的蛋白的N端或C端融合一个标签蛋白或多肽序列(如His标签、GST标签、MBP标签、SUMO标签),可带来多重好处:
简化纯化:标签作为“把手”,可通过His标签蛋白纯化(固定化金属离子亲和层析,IMAC)或GST标签纯化(谷胱甘肽树脂)等亲和层析方法,一步实现从复杂裂解液中的高效捕获,极大地提高了蛋白表达与纯化服务的效率。
增强可溶性:MBP、SUMO等大分子标签能显著改善目标蛋白在胞内的溶解性,促进正确折叠,是实现可溶性蛋白表达的有效策略。
提高稳定性:保护目标蛋白免受蛋白酶降解。
技术考量:标签可能对目标蛋白的结构、功能或免疫原性产生干扰。对于最终应用要求严格无标签的蛋白(如结晶、某些体内实验),需要通过位点特异性蛋白酶(如TEV、3C蛋白酶)将标签切除。
非融合表达
核心优势:直接表达目标蛋白的天然序列,完全避免了标签带来的任何潜在影响,获得的蛋白最为“纯净”和天然。
技术考量:纯化过程完全依赖于目标蛋白自身的物理化学特性(如等电点、疏水性、大小),通常需要多步传统的层析技术(如离子交换、分子筛、疏水层析),流程开发复杂,收率可能较低,成本较高。仅推荐在对蛋白天然性有极端要求的特定研究中使用。
融合决策:表达系统的协同选择
在实际项目中,上述选择并非孤立,而是相互交织。一个典型的技术路径规划如下:
评估蛋白性质:首先分析目标蛋白的序列特性:分子大小、二硫键数量、是否需要糖基化、推测的疏水性等。
确定宿主系统:
若为简单、小分子、无需修饰的蛋白 → 优先考虑原核蛋白表达(大肠杆菌)。
若需要正确折叠和二硫键、且需分泌 → 可考虑真核蛋白表达中的酵母系统。
若为复杂、需特定修饰的真核蛋白/膜蛋白/病毒蛋白 → 选择昆虫细胞或哺乳动物细胞系统。
设计表达策略:
在大肠杆菌中,为增加可溶性,常采用融合表达(如MBP-His双标签)。
若预期形成包涵体,则可设计为方便后续纯化复性的His标签融合形式。
在真核系统中,若希望简化纯化,同样可采用N端或C端分泌信号肽+His标签的融合设计,实现培养基上清中的分泌表达与一步纯化。
从原核蛋白表达的经济高效,到哺乳动物细胞表达的功能完备;从利用融合表达快速获取蛋白,到追求非融合表达的极致天然,每一种选择都是一次针对目标蛋白特性的精准匹配。

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